支原體污染的細(xì)胞培養(yǎng)物能用于實驗嗎

支原體污染的細(xì)胞培養(yǎng)物不能用于實驗。以下是詳細(xì)的解釋和歸納：

支原體污染對細(xì)胞的影響：

支原體污染會導(dǎo)致細(xì)胞生長緩慢、形態(tài)改變，甚至引起細(xì)胞死亡。

支原體可以大量消耗培養(yǎng)基中的營養(yǎng)和細(xì)胞代謝的基礎(chǔ)成分，如核酸前體、氨基酸、維生素、脂質(zhì)、膽固醇等，導(dǎo)致細(xì)胞增殖緩慢及各種代謝、功能紊亂甚至喪失。

支原體還會吸附在細(xì)胞表面，破壞細(xì)胞膜的完整性，更有少數(shù)類型支原體可進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)，如發(fā)酵支原體、生殖支原體和肺炎支原體。

對實驗結(jié)果的影響：

被支原體污染的細(xì)胞無法用于得出準(zhǔn)確的實驗數(shù)據(jù)。

支原體污染會干擾細(xì)胞的代謝過程，影響細(xì)胞的功能和表達(dá)，從而干擾實驗結(jié)果的分析和解讀。

支原體還可能作為外源性因素，對實驗結(jié)果產(chǎn)生潛在的干擾，使研究者難以區(qū)分細(xì)胞的內(nèi)在變化與外界因素的影響。

檢測支原體污染：

支原體污染在普通光學(xué)顯微鏡下難以被發(fā)現(xiàn)，細(xì)胞被污染早期不會表現(xiàn)出明顯的“癥狀”。

目前常用的檢測方法有：DNA染色法、支原體培養(yǎng)法、PCR法（包括凝膠電泳和熒光定量）、化學(xué)發(fā)光法等。但需要注意的是，這些方法雖然可靠，但實驗周期可能較長。

綜上所述，支原體污染的細(xì)胞培養(yǎng)物不能用于實驗，因為支原體污染會嚴(yán)重影響細(xì)胞的生長、代謝和功能，進(jìn)而干擾實驗結(jié)果的準(zhǔn)確性和可靠性。因此，在細(xì)胞培養(yǎng)過程中，需要采取一系列預(yù)防措施來避免支原體污染，如加強(qiáng)實驗室的清潔和消毒工作、選擇質(zhì)量可靠的培養(yǎng)基和血清等培養(yǎng)材料、實驗操作人員嚴(yán)格遵守實驗室規(guī)范等。如果懷疑細(xì)胞培養(yǎng)物被支原體污染，應(yīng)立即進(jìn)行檢測并采取相應(yīng)的處理措施。

對于費力擴(kuò)增的細(xì)胞（如已轉(zhuǎn)染，或經(jīng)過體外刺激），如果細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)有支原體污染，但此細(xì)胞又不愿丟棄，希望繼續(xù)培養(yǎng)，推薦使用MB公司生產(chǎn)的復(fù)合抗生素Zell Shield?。

細(xì)胞祛除支原體試劑Zell Shield使用方法：

（1）在每次使用Zell Shield?之前，細(xì)胞傳代時，先使用廠家推薦的“懸浮沖洗法”處理好細(xì)胞，再使用加了Zell Shield?的培養(yǎng)基養(yǎng)細(xì)胞，能達(dá)到更好的祛除支原體的效果（“懸浮沖洗法”的詳細(xì)步驟，見下文）。

（2）Zell Shield?常規(guī)為-18℃保存，建議使用前，先融化分裝，仍舊-18℃避光保存，使用時按需融化配制。避免反復(fù)凍融。

（3）Zell Shield?按1:100濃度可直接加入培養(yǎng)基。例如：500ml培養(yǎng)基中添加5ml Zell Shield?，50mL/瓶的Zell Shield?可供5L培養(yǎng)基使用。

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